由于技術上的原因，目前我們記錄到的神經元靜息膜電位，大都是從直徑大于20弘m的神經元中獲得。測量靜息膜電位的方法有許多種，其中一種方法是用一對電極和電位記錄儀相連，一個電極放置在細胞外，另一個微電極刺人細胞內記錄。放置在細胞外的電極一般是用乏極化處理過的銀片。微電極用玻璃管拉制而成，其為0，5-1．0pm，管中灌注導電液體。一般細胞內記錄的電極，其導電液體采用3mol／L的KCl溶液。微電極放在細胞外表面時，不能測出電位差；而當微電極向細胞內推進，其剛進入膜內的瞬間，在記錄儀上就顯示出一個快速的內負外正的電位變化，這就是靜息膜電位。第二節  靜的離子-y-說

    靜的產生目前認為有三個基本的因素：①細胞內外離子分布的不平衡，②膜上離子通道關閉和開放對離子產生不同的通透性，③生電性鈉泵的作用。

    Bemstein根據正常情況下細咆內K+濃度總是超過細胞外K+濃度許多倍的事實，提出靜產生的機制是細胞內外K+的不均衡分布。根據測量的結果，在靜息狀態下，細胞內的K+濃度超過細胞外的K+濃度，而細胞外Na+濃度超過細胞內Na+濃度很多，在這種情況下，K+有一個順著濃度梯度向細胞膜外擴散的趨勢，而Na+有向細胞膜內擴散的趨勢。Bemstein假定膜在靜息 靜息電位(restingpotential)是指神經元未受刺激時存在于細胞膜內外兩側的電位差。在所有被測量過的神經元中，其靜都在—30-—90 mV之間。例如海馬CAl區的錐體細胞的靜息電位在—60mV左右；視網膜上的視桿細胞的靜約在—30-—40mV之間。大腦皮層的錐體細胞靜息電位在—60——80mV之間。我們把膜兩側里正外負的狀態稱為極化。而膜電位的數值向負值減少的方向稱為去極化(depolarization)，向負值增大的方向稱為超極化(hyperpolarization)。例如，某種神經元的靜是—70mV，當用適當的電流使膜電位變為—90mV時，我們稱之為超極化；如果使膜電位變為—60mV，則稱之為去極化。

    由于技術上的原因，目前我們記錄到的神經元靜，大都是從直徑大于20弘m的神經元中獲得。測量靜的方法有許多種，其中一種方法是用一對電極和電位記錄儀相連，一個電極放置在細胞外，另一個微電極刺人細胞內記錄。放置在細胞外的電極一般是用乏極化處理過的銀片。微電極用玻璃管拉制而成，其為0，5-1．0pm，管中灌注導電液體。一般細胞內記錄的電極，其導電液體采用3mol／L的KCl溶液。微電極放在細胞外表面時，不能測出電位差；而當微電極向細胞內推進，其剛進入膜內的瞬間，在記錄儀上就顯示出一個快速的內負外正的電位變化，這就是靜。第二節  靜的離子-y-說

    靜的產生目前認為有三個基本的因素：①細胞內外離子分布的不平衡，②膜上離子通道關閉和開放對離子產生不同的通透性，③生電性鈉泵的作用。

    Bemstein根據正常情況下細咆內K+濃度總是超過細胞外K+濃度許多倍的事實，提出靜產生的機制是細胞內外K+的不均衡分布。根據測量的結果，在靜息狀態下，細胞內的K+濃度超過細胞外的K+濃度，而細胞外Na+濃度超過細胞內Na+濃度很多，在這種情況下，K+有一個順著濃度梯度向細胞膜外擴散的趨勢，而Na+有向細胞膜內擴散的趨勢。Bemstein假定膜在靜息利用電壓鉗方法可以記錄出沖動到來時的離子電流，但這是總的膜電流，是各種離子移動的總電流。如何把動作電位期間各種離子電流分離開呢?顯然是一個非常關鍵的問題。當然現在應用膜片鉗技術可以很方便地測量單通道電流，這將在以后章節中詳細論述。本節介紹一些除膜片鉗以外的一些離子電流分離方法。