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實驗室化學分析標準曲線的繪制

更新時間:2015-06-12點擊次數:3037

實驗室化學分析標準曲線的繪制


用生物藥物分析法(光譜法、色譜法與面議分析法)測定生物樣品中的藥物濃度時,都必須同時作標準曲線。盡管各種分析方法涉及的原理和方法技術有所不同,但標準曲線制備方法卻又共同的相似之處,如一般均采用空白生物基質中加入定量的藥物標準品混勻,配制成藥濃已知的標準生物樣品,然后與樣品同時測定,zui后用標準藥濃對響應值建立標準曲線。此外,生物藥物分析還常常面臨測定體液和器官(或組織)兩類性質不同的樣品,因此下面分別針對性的進行介紹

  體液樣品(標準曲線制備)

體液樣品以血漿、血清為zui常用,下面以血清樣品為代表(并以苯妥英血清藥濃為例),說明體液樣品測定時標準曲線的制備方法。

苯妥英的有效血藥濃度為10-20mg/L(即10-20ug/ml),標準曲線濃度應涵蓋此范圍,測定時采用內標法(卡馬西平為內標)

  1. 標準溶液的配制

苯妥英標準溶液(貯備液)的配制,精密稱取苯妥英標準品20mg,用0.1mol/l NaOH液溶解后定量轉移100ml容量瓶中,然后用蒸餾水溶解后同法定容成100ml。然后將配置的貯備液(含苯妥英0.2g/l,即20ug/100ul)置冰箱內4℃保存。

  1. 內標(卡馬西平)溶液的配制 精密稱取卡馬西平標準品20mg,用甲醇溶解后定量轉移100ml容量瓶中,并加甲醇至刻度,置冰箱內4℃保存(含內標0.2g/l,即20ug/100ul)

說明:

對藥物純度的要求:目前很多藥物尚無標準品供應,由于生物藥物分析允許的誤差稍寬,因此一般可使用符合藥典標準的原料藥物作為標準品。藥典規定原料藥物含量一般在98%以上,只要按藥典規定方法干燥后,即可供配制標準溶液。對于其他含量規定較低的藥物或從制劑中提取出來的藥物,則需要經測定含量后,按實際含量配制成標準溶液

對內標純度的要求:與被測藥物一樣,通常內標也無標準品供應。用內標法定量時要求同一批樣品中(標準曲線各管與樣品各管)加入想等量的內標,而無需確知加入內標的準確量(因內標量不參與計算),不可求內標具有高純度與高含量,但要求齊化學組成恒定,試用期內穩定,并且不含干擾自身和被測組分(藥物與待測物)等色譜峰的雜質,這是對內標純度的基本要求。在實際工作中,常常遇到某藥物為合適的內標,卻無原料藥物可供使用的情況,此時可從該藥物的只制劑中提取,并適當精處理,只要無干擾分析的雜質村子,組成穩定,即可供作內保使用

標準溶液的稀釋

標準曲線擬用5個濃度點,稀釋時取潔凈、干燥的試管5支,分別編號為a b c d e 然后按下圖方法稀釋,使每管稀釋液中含苯妥英濃度分別為5.0、40.、2.5、2.0、1.0(ug/100ul)

標準品 

說明:

為方便快速稀釋,應使用帶可更換塑料尖頭的定量移液管(微量取樣器)

倍數稀釋的原理:銀兩種水溶液混合時不會發生所容顯現,因此當標準溶液的體積苦熬大若干倍時,則藥濃降低相同倍數。所以可將濃貯備液或以稀釋后的貯備液按一定倍數比稀釋,得到所要求的藥物濃度,如于a管中先加入100ul貯備液(20ug/100ul),軟后再加入300ul蒸餾水混勻,則叨叨5ug/100ul的稀釋液,又如于C管中加入200ul以稀釋好的a管內溶液(5ug/100ul),然后加入200ul蒸餾水混勻,記得到2.5ug/100ul的稀釋液。稀釋時為確保準確的倍數比關系注意一下幾點

a、應使用干燥試管。

b、醫用同一支定量移液管吸取帶混合的兩種液體(藥物標準溶液和蒸餾水),如此可避免移液管體積不準引入的誤差。例如,試管a內的稀釋:可用同一支100ul的移液管,先加入100ul貯備液(20ug/100ul),加入蒸餾水3次(100ul*3),混勻后得到5.0ug/100ul的溶液:蒸餾水的加入改用另一只大號移液管一次加入300u.l,則可能由于移液管本身體積的準確性使兩次加液體積比偏離(1:3)而引入倍數比誤差。

c、溶解藥物標準的溶劑硬件量用蒸餾水(或稀酸,堿溶液),引用蒸餾水稀釋時不會發生縮容現象,只有不溶于水的藥物,才能考慮使用甲醇或乙醇溶解。

   配置藥物標準血清濃度時沒分空白血清中擬加入100ul藥物標準溶液稀釋液,  因此上表第二欄 欲稀釋的藥物濃度以ug/100ul計。當然表中沒分空白血清中加入的藥物稀釋液體積也可改為(50ul)時體積的準確度稍差,二加入大體積優惠增大許晴樣品預處理的體積 ,因此習慣上以加入100ul較為適宜。

   上表是先弄配藥物標準品貯備液(冰箱保存)臨用時取少部分放至是問候在采用倍數稀釋法  使成所需濃度,其優點是貯備液長期保持冷貯并且開平次數少,可保持藥物及 其濃度的穩定,有趣事甲醇或乙醇配置時,多次開屏使其濃度發生改變,當然若經試驗證明吳穎賢,一顆照此法配成目標濃度后使用。

因沒分樣品中擬加入內標(卡馬西平)溶液100ul,配制濃度也用 ug/100ul標示。上面的介紹的方法是直接將卡馬西平賠償目標濃度,實際工作中可濃配后貯存,臨用時再行稀釋。

上表中zui后一欄各管內溶液體積,系全部稀釋完畢后個管內溶液的試劑體積。配置血清藥物標準濃度時見下表,自上表沒觀眾吸取100ul,為保證有足量供吸取,因此個管內的溶液應多于100ul。

藥物血清標準濃度的配制

制備標準曲線時,需用抑制藥濃的血清標準樣品,通常是現將苯妥英標準溶液稀釋成抑制濃度,然后取一定體積加入到空白血清中混勻,得到藥物血清標準濃度,配制時可照上表對應的苯妥英稀釋液100ul,即A管中加入a液(5.0ug/100ul)、B管中加入b液(4.0ug/100ul)、C管中加入c液(2.5ug/100ul)·····一次類推,S代表供測樣品管,內城血清樣品0.2ml,補加蒸餾水100ul,使與標準曲線各罐體及一致(均為0.3ml)。雖然此時體積均一致,但各管血清量實為0.2ml,因此認為管內的藥物量系0.2ml血清所含,換算成每ml計的血清藥物濃度分別為下表所示,

標準品 

說明:

因為測定時擬用0.2ml血清樣品,因此標準曲線內加入空白血清量為1.2ml。測定時許晴樣品的去用量,應根據樣品實際含藥濃高低和測定方法靈敏度而定,含藥濃高者,許晴樣品用量可減少,具體取樣量應通過試驗確定,但無亂取樣量多少,標準曲線各管中加入的空白恤清涼英語樣品測定一致

上表中勒出1份樣品(S管),實際測定時樣品數量較多。為使操作方便,可將樣品與標準曲線鎘濃度的編號,預先寫在小塊膠布條上,再將膠布條貼在是觀賞,當樣品管依照下表末欄補加蒸餾水之后,一下各管的預處理操作*相同,而預處理個步驟中常設計溶液的轉移,須更換試管,當試管內溶液轉入另一試管后,可將其上的膠布去下,隨即轉貼于新歡的是觀賞,如此有條不紊的驚醒預處理,可加快操作速度,保證與處理完畢后各管內容物對應于元血清樣品或標準曲線各管。

標準曲線制備與樣品分析

上表配置好苯妥英個許晴標準濃度,并將個許晴樣品補加100ul蒸餾水后于個觀眾分別加入內標溶液100ul(含20ul卡馬西平),混勻后加入0.2ml磷酸鹽緩沖液(0.1mol/L,ph7.5)及乙酸乙酯1.5ml,置旋渦混合發生器上萃取10分鐘后離心(200-2500r/min)。吸取上清液1.2ml入尖底試管,并將試管置于水浴中(35-40℃)通過壓縮空氣揮干,殘渣用30ul流動相重組,進樣20ul左色譜檢測,用色譜數據處理機記錄苯妥英和內標的峰高,并計算出各分樣品(血清樣品及標準曲線各濃度)的峰高比(苯妥英/內標),現以某次測定數據為例,測得的數據及處理見表14-4,以峰高比對苯妥英血清標準濃度作圖,得到的標準曲線見下表。

標準品 

說明:

血清樣品中苯妥英濃度球閥:由14-3中待測血清樣品(S管)的峰高比(0./861),可直接沖標準曲線上查的血清樣品中苯妥英的濃度,也可將峰高比帶入回歸方程式計算后求得。

器官、組織樣品

器官、組織系半固體裝樣品,因此標準曲線制備與楊平測定方法有別于體液樣品,下面一動物肝臟內藥物分布量測定為例,賈少標準曲線制備方法、樣品測定以及藥物分布量計算方法。

1、用同種空白基質加藥物標準品制備標準曲線

測定動物肝臟內藥物分布量時,可另取健康動物肝臟,按照制備樣品肝勻漿相同方法作成空白肝勻漿。標準曲線制備時,扔參照前面提到的方法,知識用空白肝勻漿代替表中第3欄的空白許晴,尹云江的粘稠度與勻漿制備時外加的溶液里量多少有關,若加入量較少,則勻漿較粘稠,則取量可改用體積計,若加入量較少,則勻漿粘稠,則取量可改用重量,此時標準曲線橫坐標改為單位重量重要濃度。參照以上圖標A-E標準曲線各管中加入的空白肝勻漿量,亦是根據樣品分析時需要的肝勻漿量二區訂單的,(應與其等量),當于標準曲線個觀眾加入空白肝勻漿與樣品管中加入被測肝勻漿后,再按表14-2中第五欄和第六欄方法,于標準曲線個觀眾加入藥物標準溶液稀釋液100ul,于樣品管中加入等量的內標溶液混勻,取經過預處理后的溶液進行分析,一標準曲線各管得到的藥物色譜峰響應值,或藥物與內標色譜峰響應值之比(內標法)對標準曲線各濃度作圖,得到標準曲線,樣品肝勻漿中的藥物濃度,可由金陽后獲得的藥物峰響應值,從標準曲線上求得。

從上面標準曲線上得到的樣品勻漿中藥物的濃度(ug/ml或ug/g),做勻漿前可先稱定肝臟重量,做勻漿時記錄加入生理鹽水或其他溶液后的體積或重量,然后在制成勻漿,由此可知勻漿體積或重量與肝組織種之間的換算關系。當測定出勻漿中的藥物濃度后,便可換算成單位重量肝組織中韓藥量,進而得到整治肝臟內的韓藥量。用藥物標準溶液直接進樣簡歷標準曲線(共樣品*提取定容后測定用)

與藥物濃度測定相比,測定器官、組織中藥物的分布量時,需分析的樣品數量相對較少,并且不要求快速提供結果,因此可將藥物自生物材料中全部提取盡后定容,然后進行分析,直接沖標準曲線上得到對應的藥物濃度。

標準曲線的制備  可將藥物標準品溶液準確稀釋成4-5中濃度,然后自各濃度稀釋液取相同體積進樣,記錄藥物色譜峰響應值(峰高或峰面積),以藥物色譜峰響應值對藥物敬仰量(20ul內所含藥物量)作圖,級的標準曲線。此外也可曲線同一種濃度的標準溶液進行4-5次,每次進樣不同體積,同上以藥物色譜峰響應值對藥物進樣量(進樣體積內所含藥物量)左標準曲線,上述標準曲線的藥物量范圍,英語贗品分析先適應,即覆蓋樣品處理后進樣溶液內的藥物量。

藥物的*提取預定量 現將氣管,組織樣品照前述方法做成勻漿,然后準確取一定量置于試管中,加入緩沖液后用適當的有機溶劑漩渦混合萃取,林夕后分出有機溶劑層,如此反復萃取4-5次,直至將藥物萃取盡。將各次離心后分出的有幾層合并,定容后供進樣分析,若進樣分析后發現有干擾雜質,可將有機層用另一種緩沖液再行多次反萃,使藥物定量轉入水層,水層合并后定容,供進樣分析,由進樣后得到的藥物色譜峰響應值,從標準曲線上查的對應的腰五糧,再根據進樣體積與提取液定容體積。換算成提取液中的藥物量,此即為取量勻漿中含有的腰五糧,然后再換算成原器官,組織含藥物量、

為確定勻漿中的藥物萃取*需要的條件,可將定量的藥物標準品溶液加入空白勻漿中混勻然后再行萃取,以藥物能全部定量回收作為判斷指標,由此確定萃取時合適的溶劑種類、萃取次數、溶液PH,以及樣品是否需要蛋白處理等必要條件。


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