僅供科研使用，不可用于臨床診斷和治療

凍存細胞接收后的處理：

1）干冰運輸，收到細胞后推薦直接復蘇1管，另一管放入-80度冰箱保存過夜后轉入液氮，細胞直接轉入液氮暫存可能導致細胞復蘇率降低。

2）收到細胞后，若發現干冰已經揮發、凍存管瓶蓋破裂脫落,請立即拍照后與我們聯系。

注：收到凍存細胞后請先復蘇一管，如有問題請及時反饋，我們指導您復蘇第二管，請勿2管一起復蘇。

復蘇細胞接收后的處理：

1）收到細胞后，請首先檢查培養瓶是否破損或漏液，培養液是否混濁，如有漏液及培養液混濁情況請立即拍照把圖片發給我們。

2）在顯微鏡下確認細胞狀態并拍照100倍和200倍的照片2~3組以及培養瓶外觀照留存。

3）75%酒精消毒瓶身后放培養箱中靜置4-6h后，鏡檢觀察細胞密度未達到80-90%時，將細胞培養瓶內液體全部轉移至50ml無菌離心管內，1000rpm離心5min，離心后棄去上清，用新鮮培養基重懸后加入T25培養瓶或60mm皿中，補加適量培養基，T25培養瓶加6-8ml培養基。

4）如您收到細胞7天內沒有反饋相關問題，出現的細胞問題將不提供免費重發服務。

注：發貨用培養基不可再次用來培養細胞

細胞培養方法：

1、細胞傳代：細胞密度達到80-90%時即可傳代

①收集所有細胞懸液，1000rpm離心5min，小心棄去上清；

②加1-2ml新鮮培養基吹勻重懸后按照1:2比例加入2個T25培養瓶或60mm皿中，補加適量培養基，T25培養瓶加6-8ml培養基；

注：第一次傳代推薦1:2傳代，后續可根據細胞生長以及客戶需求自行確定。

2、細胞復蘇：

①將凍存管在37℃溫水中快速搖晃融化，時間1min左右，加入4-5ml培養基混勻。

②在1000RPM左右條件下離心4min，棄上清,加1-2ml新鮮培養基吹勻，將細胞懸液加入T25培養瓶或者60mm培養皿中，補加適量培養基，T25培養瓶加6-8ml培養基。

3、細胞凍存：待細胞生長狀態良好時進行細胞凍存

①收集所有細胞懸液，可細胞計數，1000rpm離心5min，棄上清；

②加入配制好的凍存培養液重懸細胞，凍存液的添加量按細胞最終濃度為1~10×10⁶/ml添加。

③將凍存管放入程序降溫盒，放入-80℃冰箱，4小時后將凍存管轉入液氮罐儲存。