線粒體復合體Ⅱ試劑盒說明書

分光光度法 25 管/24 樣

測定意義

線粒體復合體Ⅱ又稱琥珀酸-輔酶 Q 還原酶，廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞的線粒體中，催化琥珀酸氧化生成延胡索酸，同時輔基 FAD 還原為 FADH2，后者進一步還原氧化型輔酶 Q 生成還原型輔酶 Q，是呼吸電子傳遞鏈的支路。

測定原理

復合體Ⅱ的催化產物還原型輔酶 Q 可進一步還原 2,6-二氯吲哚酚，2,6-二氯吲哚酚在 605nm 有特征吸收峰，通過檢測 2,6-二氯吲哚酚的減少速率來計算該酶活性。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑組成和配制

試劑一：25mL×1 瓶，-20℃保存；

試劑二：5mL×1 瓶，-20℃保存；

試劑三：0.5 mL×1 支，-20℃保存；試劑四：液體 25mL×1 瓶，4℃保存；試劑五：粉劑×1 支，-20℃保存；試劑六：粉劑×1 支，-20℃保存；試劑七：液體 2.5mL×1 瓶，4℃保存；

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

1、準確稱取 0.1g 組織或收集 500 萬細胞，加入 1mL 試劑一和 10uL 試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將勻漿 600g，4℃離心 5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心 10min。

4、上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的復合體Ⅱ（此步可選做）。

5、步驟④中的沉淀即為線粒體，加入 200uL 試劑二和 2uL 試劑三，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10 秒，重復 30 次），用于復合體Ⅱ酶活性測定。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 605nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定

（1）工作液的配制：臨用前把試劑五和試劑六轉移到試劑四中混合溶解，置于 37℃（哺乳動物）或 25℃（其它物種）孵育 5min。

（2）在 1mL 玻璃比色皿中加入 40μL 樣本、100μL 試劑七和 800μL 工作液，立即混勻，記錄 605nm 處初始吸光值 A1 和 2min 后的吸光值 A2，計算ΔA=A1-A2。

復合體Ⅱ活力單位的計算

（1） 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。

復合體Ⅱ活力(U/mg prot)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(V 樣×Cpr) ÷T=559×ΔA÷Cpr

此法需要自行測定樣本蛋白質濃度。

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。

復合體Ⅱ活力(U/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T=113×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1 萬個細菌或細胞每分鐘消耗1 nmol 2,6-二氯吲哚酚定義為一個酶活力單位。復合體Ⅱ活力(U/10⁴ cell)=[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T =0.226×ΔA V 反總：反應體系總體積，9.4×10^-4 L；ε：2,6-二氯吲哚酚摩爾消光系數，2.1×10⁴ L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.04 mL；V 樣總：加入提取液體積，0.202 mL；T：反應時間，2 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細胞或細菌總數，500 萬。